3D LS三維激光光散射儀 差掃描量熱儀

在以靜態(tài)光散射（SLS）和動態(tài)光散射（DLS）原理為基礎(chǔ)的動靜態(tài)光散射儀器中，瑞士LS出品的三維光散射儀3D LS是一款新型儀器。它是一款采用互相關(guān)技術(shù)的三維激光光散射儀，利用兩束激光對同一散射矢量和同一散射體積進行兩個平行的散射實驗來抑制多重散射的所帶來的困擾。因此三維光散射技術(shù)突破了傳統(tǒng)光散射技術(shù)對樣品濃度和濁度的限制，3D LS不僅適用于標準的透明的稀溶液的動靜態(tài)光散射實驗研究，同時它也將動靜態(tài)光散射的應用范圍拓寬至高濃度和渾濁體系。使用三維光散射技術(shù)，用戶無需對高濃度樣品進行稀釋，可以直接研究自然無擾狀態(tài)下的體系，從而滿足了廣大高分子，膠體化學，軟物質(zhì)，材料科學，生命科學等領(lǐng)域研究人員在溶液表征上的要求。
在三維互相關(guān)技術(shù)的基礎(chǔ)上，瑞士光散射儀器公司又推出全新的3D調(diào)制技術(shù)（EP 2365313 A1），可進一步提高互相關(guān)技術(shù)的信噪比，測試更高濃度或濁度的樣品。需要注意的是，與經(jīng)典光散射不同，三維光散射相干截距理想值趨近于0.2，調(diào)制三維光散射相干截距理想值趨近于0.8。

結(jié)合下圖，我們簡單的了解一下LSI*的技術(shù)在測試中所帶來的優(yōu)勢：A-F字母分別代表不同配置的光散射儀，其中：A為傳統(tǒng)的自相關(guān)配置，B為A基礎(chǔ)上配置SG，C為3D散射，D為3D加配SG，E為調(diào)制3D，F(xiàn)為調(diào)制3D配置SG。









該儀器特點如下：
動態(tài)/靜態(tài)測量角范圍8°-155°，測量角精度優(yōu)于0.01°，關(guān)機自動定位至140°。
提供多種尺寸的樣品瓶支架，圓柱形樣品瓶直徑10mm或5mm，使用5mm 樣品瓶時，樣品量只需200mL。
選配溫控裝置，溫控范圍10-70℃，溫度低于10℃時，需使用干燥空氣或氮氣吹掃以避免水汽凝結(jié)。
采用APD（雪崩型光電二極管檢測器），具有高靈敏度（在632.8nm波長下量子效率>65%），能測量弱光散射體系。
單模光纖準直光學與集成檢測系統(tǒng)。
標配氦氖激光器：632.8nm，21mW，偏振度500:1，TEM00。
雙通道多tau相關(guān)器，最小延遲時間12.5ns，延遲時間50min，2×608互相關(guān)通道，1088自相關(guān)通道。
檢測器前2.5cm的支架可放置不同標準的濾光片。
提供自動衰減功能和手動衰減功能，0-光強連續(xù)衰減。
激光衰減系統(tǒng)結(jié)合在線入射光強的測量，軟件能夠記錄光強，并用于靜態(tài)光散射數(shù)據(jù)的歸一化。
通過軟件反控儀器操作和數(shù)據(jù)處理；使用累計量法和約束正則CONTIN算法，自動測定粒徑。 

升級選項：
樣品瓶旋轉(zhuǎn)裝置（SG）：用于非遍歷性體系如凝膠的測試，同時還可以使用方形樣品瓶，改變光程，用于高濁度樣品的測試；
格蘭湯普森棱鏡（GTP）：用于去偏振光散射的實驗，表征各向異性樣品；
濾光片：用于去除632.8nm以外雜散光，可用于有熒光樣品的測試；
高溫選項：工作測試溫度上限至140℃，可用于聚烯烴的表征。

產(chǎn)品功能：
該儀器可用于旋轉(zhuǎn)半徑、流體力學半徑（粒徑0.15-5000nm）、粒徑分布、多分散性的測定，分子量、擴散系數(shù)、均方位移、第二維列系數(shù)的測定，結(jié)構(gòu)因子、形狀因子的研究，帶電系統(tǒng)中的粒間距的測定，過程監(jiān)控（凝膠、老化、聚集……），該儀器可用來測試高度渾濁的樣品，可測試濁度上限t=100cm-1。

相關(guān)耗材：
10mm玻璃樣品瓶，5mm玻璃樣品瓶；各種規(guī)格、各種材質(zhì)的針頭式樣品過濾器。（5mm樣品瓶需訂貨）

部分論文：
1. Mingqian Tan et al., Protein corona formation of human serum albumin with carbon quantum dots from roast salmon, Food & Function（DOI: 10.1039/c9fo02967b ）;
2. Chao Wu et al.,  The mechanism of improved thermal stability of protein-enriched O/W emulsions by soy protein particles, Food & Function, 2020, 11(2);
3. Decheng Wu et al., Construction of Tough, in-situ Forming Double Network Hydrogels with Good Biocompatibility, ACS Applied Materials & Interfaces, 2017, 9 (3), 2205–2212;
4. C Zhou et al., Controllable synthesis of CdS quantum dots and their photovoltaic application on quantum-dot-sensitized ZnO nanorods, Journal of Solid State Electrochemistry , 2016 , 20 (2) :533-540
5. Yue Geng et al., Formation of 3-mercaptopropionic acid-ZnxCd1?xSe quantum dots with tunable bａnd gap, Chemical Physics Letters  Volume 634, 1 August 2015, Pages 156–159;
6. Frédéric Cardinauxet al., Interplay between Spinodal Decomposition and Glass Formation in Proteins Exhibiting Short-Range Attractions, Phys. Rev. Lett. 99, 118301 ;
7. Rein V. Ulijn et al., Biocatalytic induction of supramolecular order, Nature Chemistry, volume 2, pages 1089–1094 (2010);
8. Petri-Fink et al., Characterizing nanoparticles in complex biological media and physiological fluids with depolarized dynamic light scattering, Nanoscale, 2015, 7, 5991-5997;
9. Sandor Balog et al., Dynamic Depolarized Light Scattering of Small Round Plasmonic Nanoparticles: When Imperfection is Only Perfect, J. Phys. Chem. C, 2014, 118 (31), pp 17968–17974;
10. O.Glatter et al., Dynamic light scattering in turbid colloidal dispersions: A comparison between the modified flat-cell light-scattering instrument and 3D dynamic light-scattering instrument, Journal of Colloid and Interface Science, Volume 305, Issue 1, 1 January 2007, Pages 88-93.